XXVII Международный конкурс научно-исследовательских и творческих работ учащихся

Старт в науке

Микробиология — это наука, изучающая микроскопические организмы, их биологические свойства, классификацию, экологию и взаимодействия с другими формами жизни. К микроорганизмам относятся бактерии, вирусы, грибы, простейшие и микроводоросли. Они представляют собой древнейшую, наиболее массовую и разнообразную форму жизни на Земле [19].

Бактерии представляют собой одноклеточные прокариотические организмы, обладающие уникальным строением, отличающимся отсутствием оформленного ядра. Они выделены в отдельное Царство прокариот. [9][17]. Размеры бактерий настолько малы, что они заметны только под микроскопом, но численность их настолько велика, что в 1 грамме почвы или воды может содержаться миллионы и миллиарды этих клеток [12].

Микробиология разделяется на несколько направлений, каждое из которых фокусируется на специфических аспектах микроорганизмов: общая микробиология исследует строение, обмен веществ, генетику и экологию микроорганизмов; техническая микробиология занимается производством полезных веществ с их помощью; сельскохозяйственная — ролью микроорганизмов в почве и растениях; медицинская и ветеринарная — изучением патогенных микроорганизмов и способами контроля; иммунология — защитой организмов от инфекций; санитарная микробиология — состоянием окружающей среды и продуктов, влияющих на здоровье человека [19][24].

В природных экосистемах бактерии выполняют множество ключевых функций. Они разлагают органические остатки, благодаря чему способствуют почвообразованию и возврату питательных веществ в круговорот веществ. Этот процесс обеспечивает плодородие почвы и выделение углекислого газа, необходимого растениям для фотосинтеза. Кроме того, некоторые бактерии, например цианобактерии и клубеньковые бактерии, способны фиксировать атмосферный азот, переводя его в доступные для растений соединения, что существенно влияет на биогеохимические циклы [9][15].

В водных экосистемах бактерии выполняют роль природных очистителей, разлагая органические загрязнения. Цианобактерии, помимо этого, участвуют в фотосинтезе, выделяя кислород и поддерживая атмосферный баланс газов. Наряду с этим, бактерии влияют на формирование природных ресурсов, таких как природный газ и нефть, участвуя в их биологическом происхождении. Однако иногда бактерии вызывают «цветение воды», что связано с активным размножением определенных видов и может негативно сказаться на экологии водоемов [9][2].

В жизни человека бактерии играют как полезную, так и потенциально опасную роль. Полезные бактерии, например кишечная палочка и бифидобактерии, обитают в пищеварительном тракте, где стимулируют пищеварение, участвуют в синтезе витаминов и подавляют рост патогенных микроорганизмов. Использование бактерий человеком активно применяется в пищевой промышленности для получения молочнокислых продуктов, уксуса, а также в фармакологии для производства антибиотиков и витаминов [2]. При очистке сточных вод бактерии обеспечивают разложение органических остатков, способствуя снижению загрязнения окружающей среды.

Вместе с тем некоторые бактерии являются возбудителями разнообразных заболеваний человека, животных и растений, передаваясь воздушно-капельным, алиментарным и контактным путями. Для борьбы с инфекциями, вызываемыми бактериями, разработаны антибиотики и вакцины, что стало возможным благодаря фундаментальным исследованиям основоположника микробиологии Луи Пастера. Он изучал ферментацию и микробиологическую природу заболеваний, предложив методы их профилактики и лечения [2].

Таким образом, бактерии — чрезвычайно разнообразная и многочисленная группа организмов, играющая важнейшую роль в поддержании всех биологических и экологических процессов на планете. Микробиология стремится глубже понять их строение, функции и взаимодействия с окружающей средой, что создает основу для контроля и использования бактерий в различных сферах деятельности человека [17][15].

2. Материалы и оборудование для домашней бактериальной фермы

2.1. Необходимое оборудование

Для успешного выращивания бактерий в домашних условиях крайне важно подготовить и использовать правильные материалы и оборудование, обеспечивающие оптимальные условия для роста микроорганизмов.

Ключевым элементом домашней бактериальной фермы является питательная среда — агар. Кроме агара, необходимы чашки Петри — специальные круглые сосуды из стекла или пластика. Для домашних условий рекомендуется приобретать стерильные чашки, уже упакованные в герметичные контейнеры, чтобы минимизировать риск загрязнения. При самостоятельной подготовке стерильность достигается путем дезинфекции и строгого соблюдения правил обращения с материалами в чистой среде.

Стерильность — основной принцип, от которого зависит успешность выращивания бактерий. Все инструменты перед работой и после экспериментов необходимо подвергать стерилизации, которая может включать прокаливание на огне, обработку спиртом либо использование специальных стерилизаторов. Быстрое закрытие чашек Петри после внесения питательной среды и после посева бактерий снижает вероятность попадания нежелательных микробов из воздуха [5][6].

Среды классифицируются по происхождению (природные, искусственные, синтетические), по составу (простые и сложные), по консистенции (твердые, полужидкие, жидкие) и по назначению (общие или специальные). Специальные среды позволяют выделять определённые виды бактерий, подавляя рост других, что облегчает получение чистых культур [24][23].

В качестве альтернативы стандартному порошковому агару можно использовать другие питательные среды, например, картофельный агар, где в состав входят вареный картофель и глюкоза. Такие варианты могут быть полезны в домашних условиях при отсутствии покупных компонентов и идеально подходят для выращивания различных культур бактерий.

2.2. Приготовление агаризированной питательной среды

Агар — это желеобразное вещество, извлекаемое из красных и бурых водорослей, широко используемое для культивирования бактерий. Его уникальная структура обеспечивает твердение при комнатной температуре и устойчивость к высоким температурам, что делает агар идеальной основой для приготовления питательных сред [11]. Однако сам агар не содержит питательных веществ, необходимых для роста микроорганизмов, поэтому в состав среды добавляют дополнительные компоненты: пептон (источник азота и аминокислот), говяжий экстракт (источник углерода, витаминов и микроэлементов) и хлорид натрия (для поддержания осмотического давления и стабильности pH). Такая смесь обеспечивает оптимальные условия для роста большинства непатогенных бактерий [22][1].

Процесс приготовления агаризированной питательной среды начинается с точного расчёта компонентов. На одну чашку Петри диаметром около 10 см рекомендуется использовать примерно 1,2 г сухого порошка агара, растворённого в 60 мл горячей воды. После тщательного перемешивания раствор доводят до кипения и выдерживают на огне около минуты, чтобы полностью растворить агар и получить прозрачный раствор. Приготовленный раствор нужно остудить до температуры около 45 °C перед разливом, чтобы избежать образования конденсата и повреждения питательных веществ [11][26].

Разливать раствор следует в бесконтактном режиме, аккуратно заливая тонкий слой, который покроет дно, не слишком толстый, чтобы обеспечить хорошую аэрацию поверхности и удобство наблюдения за колониями. После заливки чашки быстро накрывают крышками, чтобы минимизировать попадание воздуха с микроорганизмами, и оставляют застывать при комнатной температуре на 30–120 минут. После затвердевания среды чашки можно хранить в холодильнике в перевёрнутом положении для предотвращения скопления влаги и продления срока годности — до нескольких месяцев [11].

Альтернативно, можно использовать рецепт картофельного агара, популярного среди домашних микробиологов. Для его приготовления берут 20 г картофеля, 4 г порошкового агара и 2 г декстрозы. Картофель варят и получают отвар, в который добавляют агар и декстрозу, затем кипятят и разливают по чашкам Петри аналогично стандартному методу. Этот вид среды стимулирует более активный рост бактерий за счёт наличия дополнительных углеводов и органических веществ [26].

Таким образом, приготовление агарированной питательной среды представляет собой технологический процесс, включающий точное дозирование компонентов, растворение и стерильный розлив в чашки Петри с последующим застыванием. Правильная концентрация агара и питательных веществ позволяет создать среду, на которой бактерии растут заметными колониями, удобными для наблюдения и дальнейшего изучения [22][1].

2.3. Инструменты и материалы: обеспечение стерильности

Стерилизация — это процесс полного уничтожения всех видов микроорганизмов и их спор на поверхностях и внутри материалов, достигаемый с помощью различных методов [17].

Стерилизацию материалов и инструментов проводят несколькими способами в зависимости от их характеристик. Для стеклянной посуды и устойчивых металлических инструментов используют сухое тепло в сухожаровом шкафу при +160–200 °C. Время выдержки составляет от 15 минут (при 200 °C) до 2 часов (при 160 °C), что гарантирует гибель всех микроорганизмов и спор. Для предметов, чувствительных к высоким температурам, подходит стерилизация влажным паром в аппаратах Коха или автоклаве при 110–130 °C около 30 минут. В домашних условиях наиболее доступен простой метод прокаливания в пламени газовой горелки или на электрическом стерилизаторе (до 850 °C) для микробиологических петель и игл [17][29].

Для менее термоустойчивых материалов или когда термическая стерилизация невозможна, применяют химическую стерилизацию с использованием спиртовых растворов, йода, хлора, фенолов или газообразных микробоцидных средств. Кроме того, воздушное облучение УФ-лампами эффективно в борьбе с микробами на поверхностях и в помещении, но не применяется для непосредственной стерилизации инструментов [17][28].

Имеет значение правильная последовательность обработки: сначала дезинфекция сразу после использования, удаление органических загрязнений, последующая мойка с использованием специальных моющих средств и тщательное ополаскивание дистиллированной водой, чтобы избежать осадков и повреждения металла. Сушка с помощью чистого полотенца или стерильного сжатого воздуха перед стерилизацией предотвращает оставление влаги, способствующей развитию микроорганизмов [21]. Осмотр инструментов на предмет механических повреждений и остаточных загрязнений завершает подготовку.

2.4. Методы посева и инкубации бактерий в домашних условиях

При внесении микроорганизмов можно использовать три основных метода. Первый — прямой контакт: аккуратно прикоснуться пальцем, ногтём, волосом или каплей молока к поверхности агара, перед этим обязательно вымыть руки с мылом для снижения риска занесения нежелательных бактерий. Второй метод — перенос с помощью стерильной ватной палочки, которой берут пробу с предполагаемой поверхности: например, с клавиатуры, дверной ручки или из ротовой полости. Третий способ заключается в разделении дна чашки на сектора маркером, позволяющем высеять несколько образцов одновременно с разделением зон посева для предотвращения смешения культур [11].

После нанесения бактерий поверхность агара должна быть ровно покрыта или иметь небольшие капли для формирования отдельных колоний. Важно избегать излишнего увлажнения среды, так как это может затруднить рост и наблюдение. Каждую чашку Петри необходимо плотно закрыть крышкой и подписать, указав дату, источник культуры и участок посева. Для защиты от случайного заражения края чашек можно обмотать скотчем или поместить в герметичный полиэтиленовый пакет [11].

Оптимальная температура зависит от вида бактерий, но для большинства домашних экспериментов достаточно поддерживать температуру около 30–37 °C. Помещение для инкубации должно быть защищено от прямого света, так как ультрафиолет негативно влияет на рост бактерий. Время инкубации составляет обычно от 4 до 6 дней, что позволяет наблюдать формирование видимых колоний с характерными по форме, размеру и цвету особенностями [11][3].

Для контроля за процессом роста полезно ежедневно открывать чашку Петри на несколько секунд в стерильных условиях, чтобы визуально оценить появление и изменение колоний. Если наблюдается сильный запах гниения или плесени, с этим образцом следует обращаться аккуратно и при необходимости утилизировать с соблюдением правил безопасности. [11].

После завершения инкубации важно провести безопасную утилизацию культур, особенно если есть сомнения в соответствии безопасности образцов. Для этого содержимое чашек дезинфицируют раствором хлорного отбеливателя (концентрация примерно 1–3%), налитым в чашку, выдерживают не менее 30 минут, а затем утилизируют вместе с чашками в бытовой мусор. При работе с культурами обязательно надевают перчатки и избегают контакта с кожей и слизистыми, чтобы минимизировать риск заражения [11].

2.5. Наблюдение и анализ бактериальных колоний

Колонии бактерий представляют собой скопления микробных клеток одного вида, выросших из одной исходной клетки на твердой питательной среде. Для визуального анализа колоний исследуют их культуральные свойства, которые помогают идентифицировать вид бактерий. Основные морфологические признаки колоний включают размеры: грамположительные бактерии обычно формируют мелкие колонии, тогда как грамотрицательные — более крупные [22].

Форма колоний варьируется и может быть плоской, приподнятой, выпуклой, а иногда с вдавленным или приподнятым центром. Важным элементом является форма краев колонии — они могут быть ровными, волнистыми, зубчатыми, бахромчатыми и другими. Поверхность колоний отличается по характеру: бывает матовой, блестящей, гладкой или шероховатой. Цвет колоний разнообразен — от бесцветных и белых до ярких оттенков желтого, голубого, красного, а иногда встречаются колонии с ирризацией — переливами цвета [20][22].

Рисунок 1. Формы колоний бактерий

Наблюдение колоний включает также оценку выделяемых ими пигментов и запахов, которые могут быть специфичными для определенных видов бактерий. Важной особенностью является диссоциация колоний — изменение их формы и структуры, например, S-тип с гладкими и блестящими колониями и R-тип с шероховатой поверхностью и неправильной формой [13]. Анализ однородности роста и морфологии способствует оценке качества культивирования и первичной идентификации бактерий [11].

Методика визуального исследования колоний важна для последующего правильного понимания полученных результатов. Неверная интерпретация внешних признаков может привести к ошибкам в идентификации микроорганизмов, что негативно скажется на безопасности работы с культурами [11][31].

3. Проведение эксперимента – посев

3. 1. Питательная среда на основе агар-агара (желе для бактерий):

Чтобы бактерии могли расти, им нужна особая «еда», которая называется питательная среда. Мы приготовили ее двумя способами:

• Что это: Агар-агар – это вещество, похожее на желатин, которое делают из водорослей. Оно застывает и становится похожим на прозрачное желе. На этом желе бактериям удобно расти, и они хорошо видны.

• Как готовили: Мы приготовили два вида питательной среды

Первая: из расчета на 60 мл обычной воды, добавили туда 1,2 грамм агар-агара, все это осторожно нагрели на плите, постоянно помешивая, пока агар-агар полностью не растворился. Кипятить сильно нельзя, чтобы смесь не «убежала».

Вторая: из расчета на 60 мл мясного бульона, добавили туда 1,2 грамм агар-агара, все это осторожно нагрели на плите, постоянно помешивая, пока агар-агар полностью не растворился. Кипятить сильно нельзя, чтобы смесь не «убежала».

• Разливка: Пока раствор был горячим и жидким, мы быстро разлили его тонким слоем в специальные круглые пластиковые баночки – чашки Петри. Сразу же закрыли крышками, чтобы внутрь не попали

 

3. 2. Сбор «проб» бактерий (как мы брали образцы)

Мы решили взять "пробы" бактерий из разных мест, где, по нашему мнению, их может быть много. Для этого мы использовали чистые ватные палочки. Каждая палочка использовалась только для одного места!

1. Пробы из школы:

   • Мы взяли пробы с самых часто используемых поверхностей: 

1) ручка входной двери класса, 

2) парта одноклассника, 

3) лавка,

4) раздевалка верхней одежды

5) стена

6) шкаф

7) перилла

8) подоконник

9) батарея

10) лавка

• Аккуратно, но уверенно проводили ватной палочкой по поверхности, как будто "собирая" невидимую грязь.

• Сразу после взятия пробы мы осторожно открывали одну из подготовленных чашек Петри (с агар-агаром или бульоном) и аккуратно "рисовали" ватной палочкой по поверхности желе или просто окунали ее в бульон.

• Сразу же плотно закрывали крышку чашки Петри. На каждую чашку приклеивали этикетку с названием места, откуда взята проба (например, "Дверная ручка", "Парта").

Рисунок. Взятие проб

2. Пробы из дома:

Дома мы взяли пробы из 9 мест: 

• 1) плинтус

• 2) дверь (комнаты)

• 3) подоконник

• 4) телевизор

• 5) диван

• 6) стул

• 7) ладонь

• 8) шторы

• 9) пол

Действовали точно так же, как в школе: проводили ватной палочкой, переносили на питательную среду, закрывали и подписывали чашку.

3.3. Инкубация (выращивание) проб

После того как все пробы были взяты и помещены в чашки Петри, мы должны были создать для них хорошие условия, чтобы бактерии начали расти. Этот процесс называется инкубация.

1. Место: мы пробовали выращивать бактерии к двух местах

Первое: шкаф сухого стерилизованы в школе в течении. Время эксперимента 46 часов.

Через 46 часов в чашках Петри в которых был приготовлен чистый агар-агар бактерии, не начали появляться. В чашках Петри, в которых был приготовлен агар-агар на мясном бульоне начали появляться колонии бактерий.

Следующие два дня пробы с бактериями доращивались в домашних условиях. Мы поставили все чашки Петри в теплое, темное место.

Второе: Мы поставили все чашки Петри в теплое, темное место. Это было либо под столом (без попадания солнечных лучей), либо в шкафу. Главное – чтобы температура была комнатной или чуть выше (около 27-35°C), так бактерии растут быстрее.

Рисунок. Закладка проб

2. Время: Мы оставили чашки на 3-5 дней.

3. Наблюдение: Каждый день мы проверяли чашки Петри и внимательно смотрели, что происходит. Мы старались не открывать крышки, чтобы не "впустить" новые бактерии из воздуха и не "выпустить" те, что уже растут.

3.4. Анализ полученных результатов

В результате проведения эксперимента у нас получились следующие данные.

Пробы взятые в школе:
Первый этап эксперимента проводился в стерилизатором шкафу ГП 20 СПУ в школе

По прошествии 40 часов получены следующие результаты (см. рисунок)

Рисунок. Колонии бактерий через 40 часов

Пробы в которых находилась питательная среда на агар-агаре и были вентилируемые чашки Петри колонии бактерий не выросли. Пробы, где была питательная среда на бульоне и закрытые чашки Петри – выросло много колоний бактерий.

Далее образцы, где наблюдались колонии бактерий были помещены в домашнюю лабораторию
- плед

- сушилка для обуви

- термометр

Через еще 48 часов колонии бактерий увеличились в размере и количестве (см. приложение). По прошествии 90 часов мы фиксируем максимальный рост бактерий, их созревание. Можно визуально отличить колонии бактерий по форме и окрасу. (см приложение)

Пробы взятые дома: пробы взятые дома мы сразу выпрашивали в домашних условиях, т.е. с использованием сушилки для обуви и пледа.

Через 24 часа уже наблюдались видимые колонии бактерий. Еще через 24 часы мы фиксировали уверенный рост колоний.

Через 72 часа бактерии бактерий развелись до своих привычных размеров, появились признаки созревания. Колонии бактерий можно определить. (см приложение)

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Результаты работы

В ходе проведенного исследования были проведены два типа экспериментов по выращиванию бактерий в домашних условиях. Эксперимент проводился в течение 90 часов, и полученные результаты представлены ниже.

Первый эксперимент:

Начало эксперимента в стерелизаторном шкафу ГП 20 СПУ

Условия: Чашки Петри с обычным агар-агаром и вентилируемые чашки.

Наблюдения: В течение всего периода эксперимента (90 часов) никаких признаков роста бактерий обнаружено не было. Поверхность агара оставалась чистой и прозрачной, без каких-либо изменений цвета или структуры.

Выводы: Обычный агар-агар и вентиляция не обеспечивают достаточных питательных веществ и условий для роста бактерий в домашних условиях.

Продолжение:

Условия: Чашки Петри с агар-агаром и добавлением мясного бульона.

Наблюдения: Уже через первые часы начали появляться небольшие колонии бактерий. К концу эксперимента (через 90 часов) наблюдалось значительное количество колоний разного размера и формы. Некоторые колонии имели характерный цвет и структуру, что свидетельствует о разнообразии видов бактерий.

Выводы: Добавление мясного бульона значительно улучшает питательные свойства среды, обеспечивая оптимальный рост бактерий. Этот метод является эффективным для выращивания микроорганизмов в домашних условиях.

Второй эксперимент в домашних условиях

Условия: Чашки Петри с агар-агаром и добавлением мясного бульона.

Наблюдения: Уже через первые часы начали появляться небольшие колонии бактерий. К концу эксперимента (через 90 часов) наблюдалось значительное количество колоний разного размера и формы. Некоторые колонии имели характерный цвет и структуру, что свидетельствует о разнообразии видов бактерий.

Выводы: Этот метод является эффективным для выращивания микроорганизмов в домашних условиях.

Общие выводы

Эксперимент показал, что успешное выращивание бактерий зависит от качества питательной среды. Использование обогащенного агар-агара с мясным бульоном позволяет добиться активного роста бактерий, тогда как простой агар-агар оказался недостаточно питательным для эффективного культивирования. Эти результаты подтверждают важность выбора подходящей среды для исследований в области микробиологии.

Выводы работы

В результате проведённого исследования по теме «Моя маленькая бактериальная ферма: Выращивание бактерий в домашних условиях» были сделаны следующие важные выводы:

1. Выбор питательной среды играет ключевую роль. Простой агар-агар сам по себе недостаточен для полноценного роста бактерий в домашних условиях. Без дополнительного обогащения питательными веществами бактерии практически не развиваются.

2. Обогащённая среда способствует активному росту бактерий. Добавление мясного бульона к агар-агару существенно увеличивает скорость размножения и разнообразие бактерий. Именно эта среда оказалась оптимальной для наблюдаемого роста микроорганизмов.

3. Домашняя среда богата микроорганизмами. Образцы, взятые непосредственно из домашней обстановки, показали быстрое развитие большого количества колоний бактерий, что подтверждает наличие множества микробов в обычной бытовой среде.

4. Правильно подобранные условия ускоряют рост бактерий. Оптимальное сочетание питательной среды и бытовых образцов позволило достичь заметного результата уже спустя короткое время (около 90 часов).

5. Важно соблюдать чистоту и аккуратность при проведении опыта. Отсутствие роста бактерий в некоторых образцах могло быть связано с недостаточной стерильностью посуды либо неправильной подготовкой среды.

Таким образом, проведённое исследование показало, что вырастить бактерии дома вполне возможно, главное — выбрать подходящую среду и внимательно относиться к условиям эксперимента. Полученные знания помогают глубже понять окружающий нас микромир и научиться контролировать распространение вредных микроорганизмов в быту.

Заключение по работе

Данная работа показала, что выращивание бактерий в домашних условиях доступно каждому при соблюдении ряда простых, но важных правил и процедур. Использование питательной среды на основе агара, стерильной посуды и грамотная техника посева создают необходимые условия для роста и изучения микробных культур без привлечения сложного лабораторного оборудования. Это открывает широкие возможности для получения практического опыта в микробиологии вне специализированных учреждений.

Практическая часть показала, что приготовление агаризированной среды из доступных компонентов возможно при соблюдении точных пропорций и стерильности, что является базисом для получения качественных и чистых культур. Использование доступных методов стерилизации и контроля стерильности инструментов и материалов позволило минимизировать риски загрязнения, повысить достоверность полученных результатов и обеспечить безопасность экспериментов вне лабораторных условий.

Особое внимание в проекте уделялось вопросам безопасности — как при работе с микроорганизмами, так и при их утилизации.

Обобщая, можно сделать вывод, что домашняя бактериальная ферма — это не только образовательный инструмент, но и эффективный способ познакомиться с микробным миром, его структурой и функциями. Организация таких ферм дома способствует развитию научной грамотности и может служить площадкой для проведения исследовательских проектов, что особенно актуально в условиях современных образовательных тенденций и потребности во внедрении практического обучения.

СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМОЙ ЛИТЕРАТУРЫ И ЭЛЕКТРОННЫХ РЕСУРСОВ

1. Рецепты питательных сред для... [Электронный ресурс] // petritest.ru - Режим доступа: https://petritest.ru/sprav/labinskaya-obshchaya-i-sanitarnaya-mikrobiologiya/8-retsepty-pitatelnykh-sred-dlya-sanitarno-bakteriologicheskikh-issledovanij, свободный. - Загл. с экрана

2. lysak.indd [Электронный ресурс] // elib.bsu.by - Режим доступа: https://elib.bsu.by/bitstream/123456789/141935/1/lysak.pdf, свободный. - Загл. с экрана

3. Безопасность работы с микроорганизмами... — Контур.Норматив [Электронный ресурс] // normativ.kontur.ru - Режим доступа: https://normativ.kontur.ru/document?moduleid=9&documentid=32636, свободный. - Загл. с экрана

4. Биопрепараты. Нюансы размножения в домашних условиях [Электронный ресурс] // procvetok.com - Режим доступа: https://procvetok.com/155816/, свободный. - Загл. с экрана

5. В. Н. Мальцев, Е. П. Пашков, Л. И. Хаустова [Электронный ресурс] // www.litres.ru - Режим доступа: https://www.litres.ru/get_pdf_trial/48686781.pdf, свободный. - Загл. с экрана

6. Выращивание бактерий в домашних условиях : 9 шагов... [Электронный ресурс] // tr-page.yandex.ru - Режим доступа: https://tr-page.yandex.ru/translate?lang=en-ru&url=https://www.instructables.com/growing-bacteria-at-home/, свободный. - Загл. с экрана

7. Границы | Инструменты для классификации растущих / нерастущих... [Электронный ресурс] // tr-page.yandex.ru - Режим доступа: https://tr-page.yandex.ru/translate?lang=en-ru&url=https://www.frontiersin.org/journals/microbiology/articles/10.3389/fmicb.2023.1279667/full, свободный. - Загл. с экрана

8. Знакомство с жильцами. Инструкция: как вырастить свою... [Электронный ресурс] // nplus1.ru - Режим доступа: https://nplus1.ru/material/2020/04/30/eye-mcrbm-exp, свободный. - Загл. с экрана

9. Исследовательский проект «Охотники за микробами» [Электронный ресурс] // pkiro.ru - Режим доступа: https://pkiro.ru/wp-content/uploads/2022/09/krohmalyova-oa-zamdirektora-sosh-s.chkalovskoe.pdf, свободный. - Загл. с экрана

10. Как выращивать культуры бактерий в чашке Петри [Электронный ресурс] // ru.wikihow.com - Режим доступа: https://ru.wikihow.com/выращивать-культуры-бактерий-в-чашке-петри, свободный. - Загл. с экрана

11. Картинки по запросу "безопасность при работе с бактериями дома" [Электронный ресурс] // yandex.ru - Режим доступа: https://yandex.ru/images/search?text=безопасность при работе с бактериями дома, свободный. - Загл. с экрана

12. Методы стерилизации лабораторной посуды, инструментов... [Электронный ресурс] // pcgroup.ru - Режим доступа: https://pcgroup.ru/blog/metody-sterilizatsii-laboratornoj-posudy-instrumentov-materialov-vozduha/, свободный. - Загл. с экрана

13. Микробиология. Часть 1. | Открытые видеолекции учебных курсов... [Электронный ресурс] // teach-in.ru - Режим доступа: https://teach-in.ru/course/microbioau, свободный. - Загл. с экрана

14. Микробиология: конспект лекций — Ксения Викторовна Ткаченко [Электронный ресурс] // kartaslov.ru - Режим доступа: https://kartaslov.ru/книги/ксения_викторовна_ткаченко_микробиология_конспект_лекций, свободный. - Загл. с экрана

15. Научно - исследовательская работа [Электронный ресурс] // eee-science.ru - Режим доступа: https://eee-science.ru/wp-content/uploads/2022/01/изучение-условий-существования-колоний-микроорганизмов2.pdf, свободный. - Загл. с экрана

16. Основные принципы обращения с лабораторным инструментом... [Электронный ресурс] // inpren.ru - Режим доступа: https://inpren.ru/tpost/dicsb40451-osnovnie-printsipi-obrascheniya-s-labora, свободный. - Загл. с экрана

17. Питательный агар - принцип, состав, приготовление, результаты... [Электронный ресурс] // bio-media.ru - Режим доступа: https://bio-media.ru/info/articles/pitatelnyy-agar-printsip-sostav-prigotovlenie-rezultaty-primenenie/, свободный. - Загл. с экрана

18. Полный курс за 3 дня. Микробиология [Электронный ресурс] // e-library.sammu.uz - Режим доступа: https://e-library.sammu.uz/uploads/books/rus tilidagi adabiyotlar/микробиология/lukovkina_a-_polnyiyi_kurs_za_3_dnya_m-a4.pdf, свободный. - Загл. с экрана

19. Полный курс за 3 дня. Микробиология, Аурика Луковкина, Тема... [Электронный ресурс] // www.livelib.ru - Режим доступа: https://www.livelib.ru/book/217283/readpart-polnyj-kurs-za-3-dnya-mikrobiologiya-aurika-lukovkina, свободный. - Загл. с экрана

20. Приготовление питательных сред - Статья в Екатеринбурге [Электронный ресурс] // medicagroup.ru - Режим доступа: https://medicagroup.ru/publications/prigotovlenie-pitatelnyh-sred/, свободный. - Загл. с экрана

21. Российские рекомендации по клинической микробиологии [Электронный ресурс] // fedlab.ru - Режим доступа: https://fedlab.ru/upload/medialibrary/a2f/t65yylgscr80g7xbj44178a094hz3lud/методы посева биоматериала на питательные среды.pdf, свободный. - Загл. с экрана

22. Стерилизация лабораторной посуды: как сделать анализы... [Электронный ресурс] // threelab.ru - Режим доступа: https://threelab.ru/blog/sterilizatsiya_laboratornoy_posudy_kak_sdelat_analizy_i_ispytaniya_tochnee/, свободный. - Загл. с экрана

23. Стерилизация: Как работает лабораторный автоклав? [Электронный ресурс] // ams-medical.ru - Режим доступа: https://ams-medical.ru/sterilizatsiya-kak-rabotayet-laboratornyy-avtoklav/, свободный. - Загл. с экрана

24. Тайная жизнь домашних микробов. Где искать и как бороться [Электронный ресурс] // realty.yandex.ru - Режим доступа: https://realty.yandex.ru/journal/post/taynaya-zhizn-mikrobov-kak-borotsya/, свободный. - Загл. с экрана

25. Технологии выращивания молочнокислых бактерий в домашних... [Электронный ресурс] // school-science.ru - Режим доступа: https://school-science.ru/19/1/55214, свободный. - Загл. с экрана

26. Что делать с пищевыми отходами и как выбрать домашний... [Электронный ресурс] // www.sberegaem-vmeste.ru - Режим доступа: https://www.sberegaem-vmeste.ru/publications/chto-delat-s-organicheskimi-otkhodami-i-kak-vybrat-domashnii-komposter, свободный. - Загл. с экрана

27. Шесть золотых правил в общении с микробами • Статьи на сайте... [Электронный ресурс] // bombora.ru - Режим доступа: https://bombora.ru/blog/stati/smert-mikrobam-shest-zolotykh-pravil-v-obrashchenii-s-mikroorganizmami/, свободный. - Загл. с экрана

ПРИЛОЖЕНИЕ

Разнообразие бактерий Эксперимент 1

Разнообразие бактерий Эксперимент 2

Разнообразие бактерий Эксперимент 1

Разнообразие бактерий Эксперимент 1

Микроскопическое строение колоний бактерий

Микроскопическое строение колоний бактерий