XXVIII Международный конкурс научно-исследовательских и творческих работ учащихся

Старт в науке

Как обнаружить бактерии без микроскопа и сохранить здоровье?

• Авторы
• Руководители
• Файлы работы
• Наградные документы

Попова Д.Е. 1

---

1Муниципальное бюджетное учреждение дополнительного образования - Городской детский экологический центр

Швецова Т.Р. 1

---

1Муниципальное бюджетное учреждение дополнительного образования - Городской детский экологический центр

Работа в формате PDF

1.1 MB

Автор работы награжден дипломом победителя III степени

Диплом школьникаСвидетельство руководителя

Введение

Люди посещают многие места, и на поверхностях остаются различные вещества и микроорганизмы. Микроорганизмы очень малы. Простым глазом их увидеть нельзя. Среди микроорганизмов могут присутствовать как безопасные, так и болезнетворные микроорганизмы, например, бактерии – возбудители.

Достаточно ли обычной влажной уборки, или необходимо применять специальные дезинфицирующие средства? Есть ли необходимость применения ультрафиолетовых ламп для промежуточной обработки, или можно обойтись без них?

Каким образом можно узнать, есть бактерии на поверхности предметов или же их там нет? На все эти вопросы мы попытаемся ответить в рамках нашей исследовательской работы.

Цель: выявить наличие и количество бактерий на поверхностях и разработать план санитарной обработки приемного кабинета в ветеринарном кабинете .

Задачи:

1. Определить необходимость и объем санитарной обработки в помещении.

2. Провести смывы с поверхностей. Произвести посев смывов при помощи готовых микробиологических экспресс тестов «петритест (ОМЧ)», оценить полученные результаты, определить эффективность предпринятых мер.

3. Разработать рекомендации санитарной обработки кабинета приема ВК.

Теоретическая часть

Дезинфекция – это комплекс мероприятий направленных на уничтожение возбудителей инфекционных заболеваний. Основные задачи дезинфекции – прерывание механизма передачи инфекции обеззараживанием различных объектов. Она выполняется с применением антисептиков и дезинфицирующих средств, так же для дезинфекции могут применятся бактерицидные ультрафиолетовые лампы.

Различают:

• Полную санитарную обработку (обработка пола, стен и всех поверхностей дезинфицирующими средствами).

• Ситуационную санитарную обработку (обработка поверхностей дезинфицирующими средствами при загрязнении).

На коже человека и в окружающей среде находится огромное количество бактерий, некоторые из них способны вызвать тяжелые болезни. Социальные объекты: такие как учебные классы, поликлиники, магазины, ветеринарные клиники посещает большое количество людей.

Возникает вопрос: какие средства и методы обработки будут достаточными что бы защитить людей от контакта с болезнетворными микроорганизмами?

Материалы и методы

В качестве общественной организации для своего исследования мы выбрали ветеринарную клинику с средней проходимостью 20 – 25 человек за рабочий день.

Для забора проб использовали рабочие поверхности: стол врача и смотровой стол. Данные объекты чаще всего контактируют с поверхностью кожи людей и животных. На каждом объекте при помощи цветного скотча был выделен квадрат со стороной равной 10 см. Смывы проводились в границах квадрата.

Кабинет оборудован 2-мя стационарными ультрафиолетовыми лампами TUV – С YZ 15W и передвижным открытым облучателем воздуха бактерицидный.

Для оценки качества метода дезинфекции и визуализации колоний бактерий мы использовали готовые микробиологические экспресс тесты «петритест (ОМЧ)». Данный тест позволяет по цвету колонии определить возбудитель.

Заборы проб производились при помощи стерильных, одноразовых зонд – тампонов. (Приложение: рис. №3)

Дезинфицирующее средство для обработки - «экоцид С» (действующее вещество: тройная соль пероксомоносульфата калия — 50 %), в разведении в соответствии с инструкцией. (Приложение: рис №4).

Действующий компонент препарата — сильный окислитель, который инактивирует и разрушает бактерии, грибы и вирусы, включая особо опасный вирус африканской чумы свиней. Органические кислоты в сочетании с буферной системой обеспечивают необходимое подкисление среды, которое оптимизирует дезинфицирующую активность окислителя. «Экоцид С» не теряет своей активности в жесткой воде, в присутствии органических загрязнений и при низких температурах окружающей среды. Приготовленные рабочие растворы препарата не разрушают материал обрабатываемой поверхности, и не обладают коррозийными свойствами. Экоцид С по степени воздействия на организм теплокровных животных относится к умеренно опасным веществам и в рекомендуемых концентрациях не обладает сенсибилизирующим и местно-раздражающим действием на кожу.

Отбор проб

Приемный кабинет Ветеринарной клиники представляет собой помещение средней площадью 50 квадратных метров. С естественным и искусственным освещением. За день через приемный кабинет проходят в среднем 20 – 25 человек со своими питомцами. Основные поверхности, которых касается множество людей: стол врача и стол приема. У обоих столов пластиковое покрытие устойчивое к любым типам обработки, а также легко переносящее воздействие коготков братьев наших меньших (Приложение: рис. №1; рис. №2).

На обоих столах при помощи клейкой ленты были выделены квадраты со стороной 10 см, для отбора проб (Приложение: рис. №5).

Вечером после рабочего дня была произведена тщательная уборка помещения: влажная уборка пола и всех поверхностей, затем дезинфекция при помощи препарата «Экоцид С» (Приложение: рис. №4).

Был приготовлен 4% рабочий раствор в соответствии с инструкцией препарата. Рабочий раствор нанесли на предварительно очищенные поверхности с помощью распылителя низкого давления с нормой расхода 300 мл/м2 при экспозиции 30 – 60 мин.

После обработки помещения было произведено кварцевание, при помощи стационарных ультрафиолетовых лампами TUV – С YZ 15W.

После обработки взяты пробы с рабочего стола и стола приема (Приложение: рис. №6).

После кабинет опечатали и до открытия клиники никто в помещение не заходил.

В течении всего дня стол приема дополнительно обрабатывается спиртосодержащим раствором после каждого приема животного.

Утром, непосредственно перед открытием клиники в 10.00, был повторный забор проб. Пробы отбирались при помощи стерильных, одноразовых зонд – тампонов.

Следующий этап забора проб мы провели в 14.00 перед плановым кварцеванием.

Кварцевание длилось 30 минут, использовались стационарные ультрафиолетовые лампами TUV – С YZ 15W и передвижной открытый облучателем воздуха бактерицидный. Сразу после кварцевания повторили отбор проб.

Сразу после окончания рабочего дня был произведен последний забор проб.

Микробиологическая оценка качества дезинфекции

Для своего исследования мы выбрали Экспресс-тесты для микробиологического контроля «Петритест» (подложка) на определение общего микробного числа (КМАФАнМ), их преимущество заключается в том, что они просты в эксплуатации и могут использоваться без специальной подготовки (Приложение: рис. № 3)

Чем выше «микробное число» контролируемого объекта (его общая обсемененность микроорганизмами), тем больше вероятность обнаружения там патогенных, потенциально опасных для человека микроорганизмов.

КМАФАнМ - это количество анаэробных микроорганизмов КМАФАнМ (ОМЧ) – это число всех микроорганизмов в 1 кубическом сантиметре (мл) или в 1 грамме (г) субстрата/пробы. Значение КМАФАнМ/ОМЧ выражается в колониеобразующих единицах КОЕ/мл и КОЕ/см3 – это микроорганизм, образующий колонию в ходе размножения.

Среда (КМАФАнМ) является питательной средой общего назначения, не имеющей в своем составе факторов, ограничивающих рост и развитие какой-либо определенной группы микроорганизмов.

Все отобранные пробы были помещены в пробирки с стерильным физиологическим раствором (Приложение: рис. № 6).

Затем на открытую тест систему по очереди нанесли на поверхность питательной среды 0,2 мл жидкости из каждого заранее приготовленного образца, используя стерильную пробирку (Приложение: рис. № 8).

Закрыли Петритест на защелки. Плавными горизонтальными движениями (из стороны в сторону) держа тест горизонтально, распределили исследуемую жидкость равномерно по поверхности питательной среды (Приложение: рис. № 9).

Поместили Петритест в термостат с температурой (30-37°С для КМАФАнМ (ОМЧ). Для предотвращения образования конденсата размещали тесты дном вверх. Визуально результаты оценивали через 24 часа при помощи определителя из инструкции тест системы (Приложение: рис. № 10).

Полученные результаты роста микроорганизмов

Собственные результаты представлены в Приложении, таблица №1.

Для определения видовой принадлежности колоний, использовали инструкцию к тесту (Приложение: рис. № 11).

При оценке роста микрофлоры на питательных средах после полной санитарной обработки и кварцевания рост полностью отсутствует на обоих объектах исследования.

Но даже без присутствия в помещении людей утром перед открытием клиники уже наблюдается рост микрофлоры на столе врача. Видовой состав колоний соответствует Enterococusfaecalis и синегнойной палочке Pseudomonas aeruginosa. В небольших количествах они могут присутствовать в окружающей среде, но в больших количествах вызывают ряд тяжелых заболеваний.

В середине дня до кварцевания мы зарегистрировали активный рост на обоих объектах исследования. На столе врача выявлен активный рост Enterococusfaecalis, Е.colliи синегнойной палочки Pseudomonas aeruginosa, на столе приема Enterococusfaecalis и синегнойной палочки Pseudomonas aeruginosa. При оценке результатов дневной пробы хорошо видна разница между столом, на котором проводится промежуточная обработка и столом без обработки.

После дневного кварцевания помещений на столе в пробах с обоих столов микрофлора полностью отсутствует.

При учете реакции отобранной вечером опять был зарегистрирован рост микрофлоры на обоих объектах исследования. По видовому составу были выявлены Enterococusfaecalis и синегнойная палочка Pseudomonas aeruginosa.

Выводы

В соответствии с разработанным нами планом, мы произвели смывы с рабочих поверхностей в помещении ветеринарной клиники.

• Произвели посевы смывов при помощи готовых микробиологических экспресс тестов «петритест (ОМЧ)». Получили стабильный рост микрофлоры на питательных средах. Убедились, что для использования данного типа тестов не нужно дополнительных специальных навыков, если следовать инструкции может справится даже не подготовленный человек.

• Исходя из полученных результатов, можно сделать вывод, что ежедневная полная санитарная обработка объектов с большой проходимостью людей необходима, это позволит снизить концентрацию микроорганизмов и защитит здоровье людей, работающих в этих помещениях. На основании полученных данных также можно заключить, что промежуточная обработка дезинфицирующими средствами помогает значительно сократить скорость размножения бактерий. Кварцевание тоже показало высокую эффективность, но применение этого метода без полной и ситуационной обработок не может очистить поверхности на длительное время.

• Наш опыт наглядно продемонстрировал важность полной и промежуточной санитарных обработок для защиты здоровья людей, работающих на социальных объектах с большой проходимостью.

• Наибольшую эффективность показал комбинированный метод полной обработки специализированными дезинфекционными средствами и кварцевания, также свою эффективность показали промежуточные обработки поверхностей и кварцевания. Кварцевание в моно - режиме убивает микроорганизмы, но вскоре опять наблюдается активный рост микрофлоры.

Рекомендации

Для санитарной обработки кабинета приема ВК

1. Необходимо проводить полную санитарную обработку 1 раз в сутки.

2. Режим кварцевания необходимо изменить. Рекомендуем кварцевать не менее 30 минут перед началом рабочего дня, 30 минут в середине рабочего дня и не менее 1 часа вечером.

3. Необходимо проводить ситуационную обработку не только стола приема, но и стола врача.

Заключение

В данной работе мы рассмотрели важность санитарной обработки помещений оценили микробиологический состав и эффективность разных методов обработки.

Защита здоровья человека — это приоритетное направление. Благодаря правильно проведенной санитарной обработке, мы можем уберечь себя и своих близких от возможных инфекций и заболеваний. Помните, что здоровье – это наш самый ценный актив, и мы должны заботиться о нем ежедневно. Проведенное нами исследование наглядно показывает необходимость санитарной обработки, а также оценки ее качества на территории социально значимых объектов с большой проходимостью людей.

Литература

1. Айгузин A.B. Решение актуальных проблем профилактики инфекционных заболеваний с использованием дезинфицирующих средств [Электронный ресурс] / A.B. Айгузин. — Режим доступа http://www.trimeda.ru/doktorstvo/celitelstvo.1210/html. — Загл. с экрана.

2. Большаков А. М., Новикова И. М. Общая гигиена / A.M. Большаков, И.М. Новикова. — Москва: Медицина, 2002. — 384 с.

3. Вашков В.И. Средства и методы стерилизации, применяемые в медицине / В.И. Вашков. — Москва, Медицина, 1972. — 250 с.

ПРИЛОЖЕНИЕ

Рисунок №1. Ветеринарная клиника

Рисунок №2. Кабинет приема ВК

Рисунок № 3. Тест система.

Рисунок №4. Препарат для санитарной обработки.

Рисунок №5. Выделение области для взятия проб на рабочем столе.

Рисунок №6. Подготовка к отбору проб.

Рисунок №7. Отбор проб.

Рисунок №8. Внесение пробы на среду.

Рисунок №9. Посев на среду сразу после внесения материала.

Рисунок №10. Оценка результата.

Рисунок №11. Определение видовой принадлежности микроорганизмов по выросшей колонии на питательной среде.

Таблица №1. Видовой и количественный состав микроорганизмов, полученный при посеве смывов со столов в кабинете ветеринарного врача